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16种常用实验细胞的培养方案

  U87MG 细胞
 
  人脑星形胶质母细胞瘤细胞,具有上皮形态,是源自中枢神经系统恶性肿瘤的细胞系。增殖速度快、侵袭性强,还存在明显的遗传与表型异质性。
 
  培养条件:DMEM 培养基,10% 胎牛血清 FBS,1% 青霉素链霉素双抗,2 mM L-谷氨酰胺。
 
  U-87 MG 细胞低密度和高密度生长形态
 
  图 1. U-87 MG 细胞低密度和高密度生长形态。
 
  注意事项:
 
  1. 细胞贴壁能力较弱:消化时间短,严格把控时间 (细胞回缩、间隙变大且部分脱落时,加 2-3 mL 完全培养基终止消化);试剂需充分预热,避免室温放置过久。
 
  2. 易聚集成团:胰酶充分消化并吹散,镜检确认单细胞状态;必要时用多聚赖氨酸包被培养器皿;避免密度过高、血清不适。
 
  3. 血清要求高:选用高品质专用培养基及血清,保障生长速度与贴壁性。
 
  4. 控制接种密度:传代比例 1:2-1:4,70%-80% 密度时传代;密度过低生长缓慢,过高易聚团。
 
  MDA-MB-231 细胞
 
  典型的三阴性乳腺癌 (TNBC) 细胞,具有高侵袭性和转移性。
 
  培养条件:Leibovitz’s L-15 培养基,10% 胎牛血清,1% 青霉素链霉素双抗。
 
  MDA-MB-231 细胞低密度和高密度生长形态
 
  图 2. MDA-MB-231 细胞低密度和高密度生长形态。
 
  注意事项:
 
  1. 接种密度:细胞生长偏慢,传代比例推荐 1:2,避免密度过低。
 
  2. 操作注意:对机械损伤敏感,消化吹打需轻柔、次数少,防止细胞形态异常或生长受阻。
 
  HGC-27 细胞
 
  人胃癌细胞,来自于未分化胃癌,能产生并分泌黏液素。
 
  培养条件:RPMI 1640 培养基,10% 胎牛血清,2 mM 谷氨酰胺,10 mM HEPES。
 
  HGC-27 细胞低密度和高密度生长形态
 
  图 3. HGC-27 细胞低密度和高密度生长形态。
 
  注意事项:
 
  1. 定期换液与污染监测:每 2-3 天换液,防止废物堆积或 pH 波动;定期查细胞形态、增殖,排查污染。
 
  2. 接种密度:传代比例 1:2 —— 1:4,70% - 80% 汇合度时传代。
 
  3. 控制胰酶消化时间:避免过长损伤细胞。
 
  4. 冻存复苏温度要求:冻存缓慢降温,复苏快速升温,减少损伤。
 
  5. 复苏后换液原则:24 小时后首次换液,避免频繁操作。
 
  H22 细胞
 
  小鼠肝癌细胞,分离自小鼠腹水,为悬浮细胞,呈淋巴母细胞样。
 
  培养条件:RPMI-1640培养基,10% 胎牛血清,1% 青霉素链霉素双抗。
 
  注意事项:
 
  1. 小鼠饲养时长:腹水接种后,小鼠饲养时间以 5 天为佳;饲养过久易导致小鼠死亡,且腹水中红细胞含量会显著升高。
 
  2. 细胞冻存前培养时间:分离得到的腹水细胞建议先体外培养 8 小时左右再进行冻存,既能有效去除残留红细胞,又可使细胞状态调整至最佳。
 
  3. 体外培养传代周期:H22 细胞体外培养增殖时,需在 5 代内进行一次腹水培养;若长期体外传代超过 5 代,细胞状态会急速变差,碎片明显增多。
 
  4. 收集腹水红细胞过多时,可以用红细胞裂解液去除;用分离液分离细胞时,可多次分离筛选,保证细胞的纯度。
 
  5. 腹水接种后,腹水长出时间会因细胞活力、接种细胞量的不同而存在差异;可通过观察小鼠状态判断接种是否成功,成功接种的小鼠活动力会出现明显减弱。
 
  CHO-K1细胞
 
  中国仓鼠卵巢细胞,实验中常用的一个细胞株,上皮样细胞,培养条件简单,贴壁强度适中,比较容易转染。
 
  培养条件:Ham's F-12 培养基,10% 胎牛血清
 
  CHO-K1 细胞低密度和高密度生长形态
 
  图 4. CHO-K1 细胞低密度和高密度生长形态
 
  注意事项:
 
  1. 接种前可将完全培养基置于培养箱平衡 15 min 以上,使 pH 稳定在 7.0-7.6。
 
  2. 消化时避免摇晃培养瓶,可 37℃ 孵育加速消化。
 
  3. 血清蛋白可竞争性抑制胰酶活性。
 
  4. 传代比例为 1:4-1:8。
 
  5. 冻存密度控制在 1-10×10⁶ cells/mL。
 
  6. DMSO 需最后添加,加完后迅速转移至低温环境梯度冻存。
 
  Caco-2 细胞
 
  人结肠腺癌细胞,贴壁生长,为多边形或梭形,增殖速度较快。
 
  培养条件:DMEM 培养基,10% 胎牛血清,1% 青霉素链霉素双抗,1% 非必需氨基酸。
 
  Caco2 细胞低密度和高密度生长形态
 
  图 5. Caco2 细胞低密度和高密度生长形态。
 
  注意事项:
 
  1. 控制接种密度 2-4×104 cells/cm2,密度过高/过低易导致分化异常或增殖延迟;80-90% 融合时传代,间隔 3-5 天,避免频繁操作。
 
  2. 细胞贴壁速度较慢,尤其是复苏初期,通常需要 2-3 天才能完成贴壁并铺展,期间细胞易出现空泡结构。
 
  3. 传代时,需确保胰酶消化后细胞充分分散为单细胞,否则会影响后续贴壁效果。
 
  4. 该细胞呈成团生长特性,细胞密度越高,胞体表面的空泡及黑点数量也会随之增多。
 
  5. 汇合度达 80% 时进行传代,此时细胞虽成片分布,但实际密度已处于较高水平。
 
  6. 若细胞过度汇合、生长过满,会严重影响细胞状态,传代后易出现碎裂、死亡的情况。
 
  7. 细胞培养时间越长,所需的胰酶消化时间也相应增加。
 
  VSMC 细胞
 
  血管平滑肌细胞,是构成血管壁中膜的核心细胞类型,在血管生理功能调节和病理重构中发挥关键作用。
 
  培养条件:DMEM 培养基,10% 胎牛血清,1% 青霉素链霉素双抗。
 
  VSMC 细胞低密度和高密度生长形态
 
  图 6. VSMC 细胞低密度和高密度生长形态。
 
  注意事项:
 
  1. 避免反复冻融,未用完冻存液需丢弃。
 
  2. 细胞汇合度 80%——90% 时传代,首次传代 1:2 接种。
 
  3. 消化时严格控制 0.05% 胰酶-EDTA 作用时间 (2——3 分钟),避免过度消化导致细胞成团或死亡;镜下观察细胞变圆、少量脱落时立即用含血清培养基终止。
 
  4. 沿瓶壁缓慢吹打 20——30 次至单细胞悬液,避免垂直吹打和产生气泡,减少机械损伤。
 
  5. 选取对数生长期 (汇合度 70% 左右)、健康无污染的低代次细胞 (≤10 代) 冻存,避免老化细胞。
 
  HUVEC 细胞
 
  人脐静脉内皮细胞源于脐带静脉组织,具有易消化解离、较快的增殖速度以及成熟的培养体系等特点。
 
  培养条件:DMEM 培养基,10% 胎牛血清,4 mM L-谷氨酰胺。
 
  HUVEC 细胞低密度和高密度生长形态
 
  图 7. HUVEC 细胞低密度和高密度生长形态。
 
  注意事项:
 
  1. 避免反复冻融,未用完冻存液需丢弃。
 
  2. HUVEC 贴壁依赖基质,未包被会降低贴壁率 (原代细胞尤甚)。
 
  3. 细胞汇合度 80%——90% (铺路石样铺满,无重叠 / 管腔样结构),避免过度汇合,会加速细胞老化。
 
  4. 用宽口移液管沿瓶壁吹打,避免垂直吹打;密度过低可加 10ng/mL VEGF 促存活。
 
  HCMEC/D3 细胞
 
  永生化人脑微血管内皮细胞,贴壁生长,呈细长梭形。
 
  培养条件:ECM 培养基,5% 胎牛血清。
 
  注意事项:
 
  1. 细胞汇合度达 80% 时操作,按 1:2——1:3 比例传代。
 
  2. 细胞悬液 “Z” 字打入含 7ml 培养基的 10cm 皿,轻柔十字晃匀不超过 10 下,静置后镜检再放入培养箱。
 
  3. ECM细胞培养基含光敏成分,需避光 4℃ 保存,配制后 1 个月内用完。
 
  PBMCs 细胞
 
  人外周血单个核细胞,其中 70%-90% 是淋巴细胞,是适应性免疫和固有免疫的核心成分。单核细胞占 10%-30%,是固有免疫的重要组分。
 
  注意事项:
 
  1. 样本预处理
 
  抗凝全血与等体积 PBS (或生理盐水) 轻柔混匀,降低粘稠度。15/50 mL 离心管预先加入 Ficoll 分离液 (体积为全血的 1/2——1/3),避免管壁残留液滴。
 
  2. 梯度离心
 
  倾斜离心管,沿管壁缓慢将稀释血加至 Ficoll 液上层,避免扰动界面。400×g、室温离心 20——30 分钟,离心机启停速度调至最低。离心后自上而下分为:血浆/ PBS 层、白膜层 (PBMCs)、Ficoll 层、粒/红细胞沉淀层。
 
  3. 收集与洗涤 PBMCs
 
  无菌移液管小心吸取白膜层 (1——2 mL),转移至新离心管,避免吸入上下层液体。加 10 mL 含 2% FBS 的 PBS,300×g 室温离心 5 分钟,弃上清,重复洗涤 1——2 次。若残留红细胞,加 2——3 mL ACK 裂解液室温孵育 3 分钟,再用 PBS 洗涤 1——2 次。
 
  4. 细胞计数与保存
 
  适量 RPMI 1640 培养基或 PBS 重悬细胞,过 70 μm 细胞筛。将 10 μL 细胞悬液用台盼蓝染色后在显微镜下计数,确定活细胞浓度。
 
  BMDC 细胞
 
  骨髓来源树突状细胞,从骨髓细胞诱导产生树突状细胞。
 
  培养条件:RPMI-1640 培养基,10% 胎牛血清,1% 青霉素链霉素双抗,1% L-谷氨酰胺,0.1% β-巯基乙醇。
 
  BMDC 如何诱导分化?
 
  1. 向骨髓细胞培养基中加入重组小鼠 GM-CSF (终浓度 20ng/mL) 和 IL-4 (终浓度 10ng/mL)。
 
  2. 37℃、5% CO₂培养 2——3 天后,吸出部分上清,补充新鲜培养基及细胞因子。
 
  3. 培养 5——8 天期间,按步骤 2 补加培养基和细胞因子;收集细胞至离心管,300×g 室温离心 5min,弃上清。
 
  4. 用含 10% FBS、20ng/mL GM-CSF、10ng/mL IL-4 的 RPMI-1640 完全培养基重悬细胞,计数后分装至 T25 培养瓶,补加新鲜培养基,继续培养 24——48h。
 
  5. 细胞聚集成团后,轻柔吹打脱落,收集悬液即为成熟 BMDC。
 
  RAW 264.7 细胞
 
  小鼠单核巨噬细胞白血病细胞,呈现出典型的巨噬细胞特征,多为圆形或不规则形,贴壁生长,适宜条件下出现伪足结构。
 
  培养条件:DMEM 培养基,10% 胎牛血清,1% 青霉素链霉素双抗。
 
  RAW264.7 细胞低密度和高密度生长形态
 
  图 8. RAW264.7 细胞低密度和高密度生长形态。
 
  注意事项:
 
  1. 极易发生极化,因此避免胰酶消化,防止诱导细胞分化;不使用 PBS 冲洗,避免刺激极化。
 
  2. 细胞密度达 80%-90%、培养基变黄时及时传代,避免密度过高或叠加成层引发自发分化。
 
  3. 观察细胞形态:圆形/椭圆形变为四角形或伸出伪足时,需立即传代,少量分化属正常现象。
 
  4. 严格使用指定培养基,血清不可随意更换;室温保持 18-25℃,避免低温诱导极化。
 
  5. 传代代数控制在 15 代内,超过后代极化概率升高。
 
  THP-1 细胞
 
  源自人急性单核细胞白血病患者的外周血细胞系,未分化时呈圆形,悬浮生长。诱导分化为巨噬细胞后贴壁生长,呈梭形/多角形等扁平状,是研究单核-巨噬细胞谱系的理想模型。
 
  培养条件:RPMI-1640 培养基,10% 胎牛血清,1% 青霉素链霉素双抗,2 mM L-谷氨酰胺。
 
  THP-1 细胞低密度和高密度生长形态
 
  图 9. THP-1 细胞低密度和高密度生长形态。
 
  注意事项:
 
  1. 冻存复苏:THP-1 细胞复苏难度高,冻存密度需保证 5×10⁵-10⁶个 /ml,避免密度过低导致复苏后状态差。
 
  2. 细胞碎片:培养中出现碎片,可待细胞密度提升后通过低速离心去除。
 
  3. 细胞聚团:少量聚团可待细胞密度扩大后自行改善;严重聚团可提高 FBS 用量或适度吹散。
 
  4. 贴壁现象:传代后轻微贴壁可轻吹收集或丢弃贴壁细胞;贴壁较多需检查培养条件是否适宜。
 
  Naive CD4+ T 细胞
 
  小鼠脾脏细胞,是尚未接触过抗原的 T 辅助细胞。采用磁珠分选方法进行分离,基于抗原和抗体特异性结合,利用表面偶联特异性抗体,精准捕获目标细胞,再通过磁场实现快速分离,具有纯度高、操作简便、对细胞活性影响小的特点。
 
  培养条件:RPMI 培养基,10% 胎牛血清,L-谷氨酰胺,青霉素链霉素双抗,β-巯基乙醇。
 
  『如何培养?』
 
  1. 样本准备:单细胞悬液 (如 PBMCs、组织消化液) 离心洗涤,用缓冲液重悬并调整浓度。
 
  2. 磁珠孵育:按比例加入磁珠,4℃或室温避光孵育 10-30 分钟,期间轻柔混匀。
 
  3. 磁场吸附:将离心管放入磁力架,静置 2-5 分钟,待磁珠细胞复合物完全吸附。
 
  4. 洗涤纯化:移除上清,加入缓冲液洗涤 2-3 次,每次吸附后弃上清。
 
  5. 洗脱收集:脱离磁场,用适量缓冲液或培养基重悬细胞,获得纯化的目标细胞。
 
  BMSCs 细胞
 
  大鼠骨髓间充质干细胞,具有多向分化潜能。
 
  培养条件:DMEM 低糖培养基,10% 胎牛血清。
 
  『如何培养?』
 
  1. 完全培养基重悬细胞,T25 培养瓶接种 (密度 1×10⁷细胞 / 瓶);
 
  2. 37℃、5% CO₂培养,静置 24 小时后首次换液 (去除未贴壁细胞);观察长梭形、集落状贴壁细胞。
 
  3. 传代:80% 融合时胰酶消化 2-3 分钟 (镜下见细胞回缩),加含血清培养基终止,离心后重悬,按 1:2 或 1:3 接种;
 
  GC-1 spg  细胞
 
  小鼠精原细胞,上皮样细胞,贴壁生长。
 
  培养条件:DMEM 培养基,10% 胎牛血清,1% 青霉素链霉素双抗。
 
  『细胞传代小妙招』
 
  1. 细胞密度 >80% 时传代,弃旧培养液。
 
  2. PBS 轻柔冲洗细胞 2-3 次 (可摇晃培养瓶增强效果)。
 
  3. 加预热胰蛋白酶覆盖细胞层,轻晃培养瓶助消化。
 
  4. 镜下观察 90% 细胞脱落 (约 1min),加 2-3ml 完全培养基终止消化。
 
  5. 细胞悬液转入 15ml 离心管,1200rpm 离心 3min。
 
  6. 弃废液,2ml 完全培养基重悬细胞后分装至新瓶。十字晃动培养瓶使细胞均匀分布,置于 37℃、5%-10% CO₂ 培养箱。
 
  Section.02
 
  小结
 
 
  不同细胞的培养需求各有差异,本期我们聚焦 16 种常用细胞,整理分享了实操性极强的培养经验。希望这些干货内容能切实帮到大家,让细胞培养更顺利、更高效!

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